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肾脏类器官及动物模型验证:氧化还原调控联合STING沉默治疗急性肾损伤
来源:华津生物微信公众号 | 作者:华津生物 | 发布时间 :2026-09-11 | 95 次浏览: | 🔊 点击朗读正文 ❚❚ ▶ | 分享到:
山东大学团队构建D4F-CeO₂@LNP-CasRx(STING)平台:CeO₂清除ROS,CasRx沉默STING转录本,D4F肽靶向巨噬细胞递送。在RAW264.7细胞中STING蛋白降低、ROS阳性率从71.9%降至24.5%、M1→M2转变;条件培养基转移至缺氧肾小管细胞后凋亡与ROS降低、抗氧化酶升高。PBMC偶联肾脏类器官中FITC阳性率从9.65%升至27.5%、Treg频率升至14%、γH2AX与HAVCR1降低。小鼠I/R-AKI模型中肾功能改善、ROS/STING/TBK1/IRF3/NLRP3降低,空间转录组显示从M1炎症向M2/Treg修复转变,抗氧化蛋白Sod2/Cat/Gpx1升高。该平台以“氧化还原+RNA沉默+靶向递送”协同策略重塑免疫微环境,为AKI治疗提供新思路。

引言

近日,山东大学齐鲁医学院齐鲁医院郭立强教授、赵升田教授联合山东大学第二齐鲁医院张秀琳教授团队在Advanced Science(IF 14.1)在线发表题为“D4F‐Functionalized Ceria Nanozyme‐CasRx Platform Suppresses STING and Reprograms the Renal Immune Niche in Acute Kidney Injury”的研究,介绍了一种新型纳米酶-CasRx基因编辑平台(D4F-CeO₂@LNP-CasRx(STING)),用于治疗急性肾损伤(AKI),特别是缺血再灌注(I/R)引起的肾损伤。该平台旨在通过同时干预氧化应激和STING介导的炎症信号通路,重塑肾脏免疫微环境,从而保护肾小管并促进修复。

研究背景

急性肾损伤是一种高发病率、高死亡率的临床综合征,缺血再灌注是其常见原因。其损伤机制并非单一因素所致,而是涉及氧化应激、线粒体损伤、mtDNA释放、STING通路激活以及巨噬细胞-肾小管交互放大炎症等多个环节相互耦合、彼此强化。现有纳米疗法多聚焦于单一机制,例如单纯清除活性氧或递送抗炎货物,对免疫微环境重塑的关注相对不足,难以打断氧化应激与天然免疫之间的恶性循环。基于这一背景,构建一个能够同时干预多个关键节点的协同治疗平台,成为突破现有疗法局限的重要方向。


平台设计

该平台整合了三个功能模块,分别针对AKI病理循环中的不同环节。CeO₂纳米酶负责催化清除ROS,缓解氧化应激;CasRx(STING)靶向沉默STING转录本,抑制下游TBK1/IRF3磷酸化,从而削弱天然免疫炎症信号的放大;D4F肽作为一种载脂蛋白A-I模拟肽,能够增强巨噬细胞摄取和肾脏靶向递送,使治疗组分更有效地富集于疾病相关的单核吞噬细胞区室。三者协同,旨在从氧化还原调控、RNA水平基因沉默和细胞靶向递送三个层面打断损伤循环。

图1. D4F功能化二氧化铈纳米酶/CasRx平台概览

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主要结果

1

构建与表征


研究通过逐步静电组装策略成功构建了D4F功能化脂质纳米颗粒,粒径约215–245 nm,PDI约0.22–0.25,表面电荷符合预期。电子自旋共振、ABTS、DPPH和溶氧实验证实,制剂化后CeO₂仍保留自由基清除活性,并具备类过氧化氢酶活性。在PBS或含10%胎牛血清的DMEM中,4°C和37°C条件下7天内粒径未出现突增,理化稳定性良好,细胞相容性和溶血实验也显示工作浓度范围内安全性可接受。这些结果为后续细胞和体内实验提供了基础。

图2. D4F-CeO₂@LNP-CasRx(STING)的构建与表征

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2

细胞水平


在RAW264.7巨噬细胞中,D4F功能化显著提高了绿色荧光蛋白的递送效率,阳性细胞比例达到48.2%,明显优于未功能化和单功能制剂。在脂多糖刺激条件下,含CasRx的制剂降低了STING总蛋白丰度,其中D4F功能化组降幅最大;磷酸化STING与总STING的比值无显著变化,但磷酸化TBK1与总TBK1、磷酸化IRF3与总IRF3的比值呈渐进性下降,表明治疗效应源于STING丰度降低,而非下游蛋白被全面抑制。通过第二条独立的STING靶向向导RNA以及抗向导RNA识别的回补构建体,研究验证了序列特异性。同时,D4F功能化制剂将脂多糖诱导的活性氧阳性细胞比例从71.9%降至24.5%,显著优于单功能制剂和未功能化双功能制剂。巨噬细胞表型也发生转变,CD86阳性(M1样)比例下降,CD206阳性(M2样)比例上升,肿瘤坏死因子α、白细胞介素6、趋化因子CCL5、转化生长因子β降低,白细胞介素10升高,支持巨噬细胞向抗炎促修复状态转变。

图3. D4F功能化增强细胞内递送并减弱脂多糖刺激的RAW264.7巨噬细胞中的STING信号和活性氧

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3

巨噬细胞-肾小管交互


条件培养基转移实验进一步验证了巨噬细胞表型改变的功能意义。将处理后的巨噬细胞分泌组转移到缺氧损伤的TCMK-1肾小管上皮细胞后,来自D4F-CeO₂@LNP-CasRx(STING)处理巨噬细胞的条件培养基显著降低了受体细胞的凋亡比例和ROS积累,提高了GSH/GSSG比值、过氧化氢酶和超氧化物歧化酶活性,并降低了Tnf、Il1b和Il6的表达。由于受体细胞并未直接接触纳米颗粒,这些结果明确表明,巨噬细胞分泌组的重编程是肾小管保护效应的重要中介环节。

图4. D4F-CeO₂@LNP-CasRx(STING)改变巨噬细胞活化和炎症分泌组

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图5. 巨噬细胞条件培养基调节缺氧诱导的肾小管损伤

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4

肾脏类器官与PBMC共培养


在外周血单个核细胞(PBMC)偶联的肾脏类器官中,D4F功能化提高了纳米平台在缺氧组织中的积累,FITC阳性率从9.65%升至27.5%,光学切片显示其在10–50微米深度处的荧光信号更强。同时,D4F功能化增加了CD4⁺FOXP3⁺ Treg频率,从约9%升至14%。在损伤读出方面,D4F-CeO₂@LNP-CasRx(STING)组表现出最高的类器官活力、最弱的γH2AX信号和最低的HAVCR1表达,表明该平台在更复杂的组织环境中仍能提供保护和修复支持。

图6. D4F功能化改善类器官相关蓄积并减轻缺氧损伤

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5

体内分布与安全性


全身成像显示,D4F功能化制剂在1至48小时内肾脏区域荧光更强、更持久,离体器官成像和器官特异性时间曲线进一步证实了肾脏的持续增强蓄积。肾脏切片共染显示,D4F功能化增加了Cy5.5荧光与F4/80⁺巨噬细胞的空间重叠,外周血中F4/80⁺细胞表现出最强的Cy5.5信号,表明增强的肾脏蓄积与巨噬细胞相关分布模式密切相关。在安全性方面,健康小鼠接受两次间隔3小时的静脉注射后,45天主要器官组织学检查未见明显异常,血液学和生化指标与生理盐水组相当,支持该给药方案下良好的体内耐受性。

图7. D4F功能化改变体内分布并增加巨噬细胞相关的肾脏蓄积

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6

治疗效果(小鼠I/R-AKI模型)


在小鼠肾缺血再灌注模型中,D4F-CeO₂@LNP-CasRx(STING)显著改善了肾功能,降低了血尿素氮和血清肌酐,并减轻了肾小管损伤评分。DHE荧光显示治疗组肾脏ROS水平降低,CD11b⁺巨噬细胞中STING信号及下游TBK1、IRF3磷酸化受到抑制,全肾NLRP3、IL-1β和KIM-1水平也下降。离体培养的肾脏巨噬细胞显示,治疗组分泌更少TNF-α和IL-6、更多IL-10,与抗炎促修复表型一致。PAS染色和两个月后的Masson染色分别支持急性期肾小管形态保留和长期间质胶原沉积减少。

图8. D4F-CeO₂@LNP-CasRx(STING)减轻肾脏缺血再灌注损伤

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7

空间转录组与蛋白质组


空间转录组学显示,治疗组肾脏从炎症/M1主导的免疫微环境转向修复/M2和Treg富集的状态,近端小管不再紧密相邻于炎症性巨噬细胞富集区,而是嵌入更平衡的免疫微环境。STING/IFN、NF-κB和炎症小体相关基因表达受到抑制,修复相关巨噬细胞标志物如Mrcl、Cd163、Msr1相对富集。蛋白质组学从正交层面验证了这些发现,治疗相关蛋白富集于活性氧解毒、过氧化物酶体代谢、FOXO介导的转录、脂肪酸代谢、谷胱甘肽代谢和线粒体生物发生,而AKI相关蛋白与NF-κB激活、TNF信号、凋亡、胞质DNA感知和衰老相关分泌表型相关。STING/DNA感知模块和NF-κB通路组分在治疗肾脏中广泛减弱,抗氧化和修复相关蛋白如Sod2、Cat、Gpx1、Arg1、Mrcl升高。

图9. 细胞分辨的空间转录组学与肾脏免疫细胞分析

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结论

该研究提出了一种“氧化还原调控 + RNA水平STING沉默 + 巨噬细胞靶向递送”的协同治疗策略,在细胞、类器官和动物模型中均表现出对AKI的保护作用,并重塑了肾脏免疫微环境。空间转录组和蛋白质组分析进一步将这些效应与炎症损伤程序收缩以及抗氧化、代谢和修复相关网络恢复联系起来。作者认为,这种RNA递送纳米酶平台有望为AKI治疗提供新的思路,但延迟治疗、长期铈清除、质粒持久性、免疫原性等问题仍需进一步研究,剂量-反应关系、药代动力学以及AKI向CKD转化的定量结局也有待明确。



创新点

双机制协同:CeO₂清除ROS与CasRx沉默STING相结合,打断氧化应激与天然免疫之间的恶性循环,而非仅针对单一病理环节。

D4F功能化:通过载脂蛋白A-I模拟肽增强巨噬细胞摄取和肾脏靶向,使治疗组分富集于疾病相关的单核吞噬细胞区室,并参与免疫微环境调控。

多维度验证:从细胞、条件培养基、类器官到动物模型,再到空间转录组和蛋白质组,证据链完整,机制与表型相互印证。

可编程性:CasRx可替换靶点,平台具有模块化扩展潜力,未来可能针对其他可诱导的炎症转录本或不同靶细胞配体进行优化。

参考文献:

Chen W, Li M, Wang X, Sun J, Zhang Z, Gong Y, Shi B, Yu N, Mao Y, Zhao S, Zhang X, Guo L. D4F-Functionalized Ceria Nanozyme-CasRx Platform Suppresses STING and Reprograms the Renal Immune Niche in Acute Kidney Injury. Adv Sci (Weinh). 2026 Sep 6:e77517. doi: 10.1002/advs.77517. Epub ahead of print. PMID: 42702884; PMCID: PMC13547695.