
引言

常染色体显性多囊肾病(ADPKD)是终末期肾病的常见遗传病因,约10%的病例由其进展而来,其中85%源于PKD1杂合突变。cAMP通路驱动囊肿进展,但早期事件尚不清楚,也缺乏能准确反映杂合突变背景的药物研究模型。现有模型各有局限:动物模型存在种属差异,患者细胞系易受环境影响,人胚胎干细胞类器官也未能证实杂合突变可重现囊肿表型。因此,亟需建立遗传精准的ADPKD类器官模型,用于药物筛选与机制研究。
为此,日本京都大学iPS细胞研究与应用中心(CiRA)的Kenji Osafune团队在题为“A novel ADPKD model using kidney organoids derived from disease-specific human iPSCs”的研究中,通过构建PKD1基因编辑及患者来源的hiPSC肾脏类器官,系统验证了囊肿形成的遗传基础与药物反应,为此类模型的可行性与应用价值提供了关键证据。
研究内容
首先,研究成功构建了PKD1基因编辑的hiPSC系作为肾脏类器官ADPKD模型基础。研究人员针对PKD1基因外显子34的剪接受体位点设计sgRNA,该编辑可导致移码突变和提前终止密码子,使PKD1蛋白截短失活,同时避免前33个外显子中6个高度相似假基因的脱靶风险。Sanger测序证实成功获得了野生型(WT)、PKD1杂合突变(PKD1+/-) 和 PKD1纯合突变型(PKD1-/-) 三种基因型的hiPSC系,cDNA测序进一步确认突变导致移码并产生提前终止密码子,预测蛋白被截短。随后将三种基因型hiPSC分化为肾脏类器官,至第10天时三者均形成致密、结构完整的球状类器官且外观无差异;免疫荧光染色显示足细胞(PODXL)、近端小管(LTL)和远端小管(CDH1)分段结构在三种基因型中均正常存在且分布模式相似,证明PKD1突变不影响类器官分化能力,为后续囊肿诱导实验奠定了基础。(图1)

图1. PKD1突变型hiPSC系的建立及其向肾脏类器官的分化
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在肾脏类器官ADPKD类器官模型验证阶段,研究发现毛喉素(Forskolin)能诱导PKD1突变型类器官形成囊肿,且纯合突变型囊肿最为严重、杂合突变型次之、野生型极少,充分体现了PKD1突变在囊肿形成中的关键作用。经毛喉素处理7天后,野生型类器官几乎无囊肿,杂合突变型出现明显囊肿,纯合突变型则形成更大、更多的囊肿;定量分析证实三种基因型之间的囊肿面积占比差异具有统计学意义(p < 0.005和p < 0.001)。免疫荧光染色显示囊肿主要起源于近端小管(LTL⁺),少数为远端小管(CDH1⁺),肾小球区域未受累及,且部分LTL阳性囊肿染色减弱提示上皮细胞去分化。(图2)

图2. 毛喉素(Forskolin)诱导人肾脏类器官形成囊肿表型
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研究进一步用ADPKD患者来源的hiPSC验证了模型的可重复性。患者来源的hiPSC成功分化为结构完整的肾脏类器官,且三种分段结构均正常存在。经毛喉素处理7天后,两位患者来源的类器官内部均出现大量透亮囊肿,而两个对照组几乎无囊肿;定量分析显示患者组囊肿面积显著大于对照组(p < 0.001)。免疫荧光染色显示囊肿主要起源于近端小管(LTL⁺),少数起源于远端小管(CDH1⁺),与基因编辑模型的表型高度一致,证实患者来源肾脏类器官模型能重现囊肿形成。(图3)

图3. ADPKD患者来源的肾脏类器官重现囊肿形成
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最后,研究验证了肾脏类器官ADPKD模型模型作为药物筛选平台的可行性。在毛喉素存在下用不同药物处理患者来源类器官7天,结果显示:托伐普坦(Tolvaptan)处理组囊肿仍大量存在,与阳性对照组无显著差异,与毛喉素直接激活cAMP、绕过V2R受体的机制一致;而CFTR抑制剂172和依维莫司(mTOR抑制剂)处理组囊肿均明显减少,定量分析显示囊肿面积分别显著减少(*p < 0.05和**p < 0.005),验证了CFTR和mTOR信号通路在囊肿发生中的重要作用。组织学检查显示毛喉素处理1小时后肾小管即明显扩张,而加入CFTR抑制剂172后扩张被显著抑制,证明该抑制剂作用于囊肿形成的早期阶段,通过阻断CFTR介导的液体分泌来抑制囊肿起始。(图4)

图4. 肾脏类器官是鉴定ADPKD新治疗靶点的潜在筛选平台
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总结
该研究从基因编辑模型构建出发,经表型验证和患者来源模型确认,最终建立了一套完整的ADPKD肾脏类器官体系。该ADPKD肾脏类器官模型不仅证实了杂合突变背景下的囊肿形成能力,还成功验证了已知药物反应的预测效度,为ADPKD的早期机制探索和药物筛选提供了可靠的体外平台,也为其他遗传性肾病类器官模型的构建提供了可借鉴的研究范式。
参考文献:
Shimizu T, Mae SI, Araoka T, Okita K, Hotta A, Yamagata K, Osafune K. A novel ADPKD model using kidney organoids derived from disease-specific human iPSCs. Biochem Biophys Res Commun. 2020 Sep 3;529(4):1186-1194.
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